Guillaume Diss
Deep mutational scanning of entire human protein interaction domain families
Protein interaction networks represent the backbone of the cell’s functional organization. Their architecture relies on the specificity of these interactions. Mutations that alter specificity may rewire the network and the way it coordinates biological processes, and lead to diseases or functional innovations. Understanding how the sequence of a protein determines the specificity of its interaction profile thus represents an important step towards a model of the genotype-phenotype map.
To address the sequence-function relationship in protein-protein interactions, we conducted a deep mutational scanning of the entire human basic leucine zipper (bZIP) interaction network. This interaction domain family, composed of 54 members in humans, has served as a model system for the study of protein interaction specificity. While the general rules of bZIP specificity are relatively well known, it remains impossible to predict interaction partners accurately.
Using our established double-deepPCA system, we measured the effect of all single amino acid substitutions in all 54 members, on the affinity for all 54 wild-type members. This dataset of ~2M quantitative protein-protein interaction measurements enabled training a deep neural network that captures the sequence-function relationship in order to quantitatively predict the free energy of binding between two bZIPs from their sequence alone. This bZIP model can be applied to predict competitive inhibitor that are more specific to their targets, interpret genetic variation in bZIP domains found in disease databases, predict orthogonal bZIP pairs for synthetic biology applications or predict bZIP networks in extent and ancestral species to study the evolution of the protein interaction network formed by core transcription factor family.
I will present the dataset and the deep learning model, as well as preliminary data on two other families, basic helix-loop-helix and SH3 domains, for which we plan to collect 6 and 20M affinity measurements respectively. We foresee that applying this strategy on a variety of domain families of different architecture will enable the development of general models that can predict the affinity of an interaction from the sequence of the two partners.
Prof. Karine Auclair
After graduate studies focusing on a Diels-Alderase at University of Alberta (with J. C. Vederas) and a postdoctoral fellowship at UC San Francisco to work on heme proteins (with P. R Ortiz de Montellano), Auclair joined the McGill chemistry department in 2002 at the rank of Assistant Professor. She was promoted Associate Professor with Tenure in 2009, and Full Professor in 2016. She is also currently on the Board of Directors and member of the Scientific Board at Carbios, a company focusing on biorecycling of plastics. Among several awards, Auclair holds the Canada Research Chair in Antimicrobials and Green Enzyme, and is recipient of the CIC Clara Benson award, two McGill Professorships (Fessenden and Tomlinson), and the Leo Yaffe teaching award. Her success is further reflected in several patents, >100 invited seminars around the world, several patents, and ~100 peer-reviewed publications in high profile journals, many of which have been highlighted extensively. Auclair is a bioorganic chemist recognized internationally for her contributions to the field of antibiotic resistance, and more recently, for the innovative concept of mechanoenzymology in moist-solid reaction mixtures.
Why use enzymes in moist-solid reaction mixtures?
Enzymes are typically manipulated as dilute aqueous solutions. This is however remote from their natural environment. For example, it is well-recognized that the cell is a highly crowded milieu, with a total molecule concentration estimated to ~400 mg/mL and transient phase separation to produce biomolecular condensates. Furthermore, many enzymes are secreted by microorganisms in the environment (e.g. cellulases, chitinases, and cutinases), and work directly on surfaces exposed to air moisture. From this perspective, we envisaged that some enzymes might have evolved to work optimally in moist-solid mixtures. This led to the development of an unconventional and highly efficient method for biocatalysis without bulk water. Our process takes advantage of alternating periods of brief, gentle mechanical mixing and static incubation (RAging) of these moist-solid reaction mixtures. It is especially promising for poorly soluble and chemically recalcitrant substrates such as biomass and plastic waste.
Dr Laurent BAZINET
Professeur au Département de Sciences des Aliments et titulaire de la Chaire de Recherche en Partenariat sur la «Valorisation Intégrée des coproduits par des Technologies Alimentaires écoefficientes dans le cadre d’une Économie circulaire (Chaire VITALE)», Institut sur la Nutrition et les Aliments Fonctionnels (INAF), Université Laval, Québec, G1V 0A6 Canada.
Le Dr Laurent BAZINET a étudié en agro-alimentaire à l’École Supérieure d’Agriculture D’Angers (France) où il a obtenu en 1993 son diplôme d’ingénieur en agriculture. Il a continué ses études universitaires à l’Université Laval (Québec, Québec) où il a obtenu un Master’s (1994) et un Ph.D. (2000) en sciences et technologies des aliments. Depuis juillet 2002, il est professeur, au département de Sciences des Aliments, à l'Université Laval où il enseigne l’ingénierie des procédés industriels alimentaires et la transformation et conservation des aliments. Le Dr. Bazinet est titulaire de la Chaire de Recherche en partenariat sur la Valorisation Intégrée des coproduits par des Technologies ALimentaires écoefficientes dans le cadre d’une Économie circulaire (Chaire VITALE), directeur du Laboratoire International Associé sur la Bioproduction d’Antimicrobiens Naturels (LIAAN), et responsable du Laboratoire de Transformation Alimentaire et Procédés Électromembranaires (LTAPEM). Il est aussi un membre actif de l’Institut sur la Nutrition et les Aliments Fonctionnels (INAF) et du Centre de Recherche en Sciences et Technologies du Lait (STELA).
Les intérêts de recherche du Dr Bazinet portent sur l’étude des phénomènes électrodialytiques et leurs impacts sur les composés bio-alimentaires et leurs bénéfices santé. Cette programmation de recherche a pour but de concevoir, optimiser et développer de nouvelles techniques et technologies améliorant l’écoefficience des lignes de production alimentaire tout en permettant la valorisation des co-produits dans le cadre d’une économie circulaire. Il a, entre autres, développé et breveté une nouvelle technologie appelée électrodialyse avec membrane de filtration (EDMF). Cette technologie permet la séparation de molécules chargées en fonction de leur charge et de leur taille. Cette technologie, qui est maintenant rendue à l’échelle semi-industrielle, a démontré une très haute sélectivité pour la séparation de molécules de natures différentes (polyphénols, oligomères de chitosane, peptides bioactifs, etc…) provenant d’isolats variés. Il a été/est impliqué dans divers projets en purification de molécules bioactives, mise au point de nouvelles technologies et applications électromembranaires, amélioration et évaluation de l’écoefficience des procédés, caractérisation et identification de molécules bioactives.
Il dirige et co-supervise actuellement 4 M.Sc., 10 Ph.D et 3 Post-doc dans le cadre de 8 projets de recherche dont le budget total annuel s’élève à plus de 1.0 M$. Le Dr. Bazinet a publié à ce jour 257 articles évalués par les pairs, 18 livres et chapitres de livres, breveté 8 technologies et présentés 434 conférences et affiches. De plus, selon une étude bibliométrique indépendante parue fin 2016 et portant sur l’ensemble des articles publiés dans le domaine de l’électrodialyse au cours des 24 dernières années, le Dr Bazinet, selon l'indice h (ou indice de Hirsch) qui est un indice quantifiant la productivité scientifique et l’impact d'un scientifique en fonction du niveau de citation de ses publications, se situe au 3ème rang mondial dans son domaine de la recherche. Enfin, en 2020, il a été reconnu comme le leader mondial de l'électrodialyse avec membrane de filtration et comme faisant partie du 2% des meilleurs scientifiques au monde.
Progrès récents en électrodialyse avec membrane de filtration (ÉDMF) pour la séparation de peptides bioactifs : des applications à la mise à l’échelle
Le secteur alimentaire génère chaque année de très grands volumes de coproduits tels que le lactosérum (210 millions de litres/an au Canada) et le sang d’abattage (68 millions de litres/an de sang de porc). Il est donc nécessaire de valoriser ces coproduits afin de limiter l’impact environnemental de ce secteur industriel. Ces coproduits sont riches en protéines qui peuvent être revalorisées sous forme de peptides bioactifs après hydrolyse enzymatique. Cependant, la purification de ces peptides bioactifs et une phase nécessaire pour accentuer la ou les bioactivité(s) visée(s). Plusieurs techniques existent à l’heure actuelle pour séparer ces peptides bioactifs, mais elles ont plusieurs désavantages. Une technique appelée génériquement électrodialyse avec membrane de filtration (ÉDMF) a été développée et brevetée, il y a une dizaine d’années, et a récemment fait l’objet d’une mise à l’échelle semi-industrielle en collaboration avec un équipementier. Nous présenterons donc plusieurs applications de cette technologie qui ont été développées au cours des dernières années dans notre équipe de recherche et nous ferons un bref aperçu des progrès très récents réalisés dont l’utilisation de l’intelligence artificielle pour prédire certains mécanismes de migration en cours de procédé. Nous présenterons aussi les plus récents résultats concernant la mise à l’échelle de cette technologie et son insertion dans le cadre d’une économie circulaire.
Dr Yves Durocher
Yves Durocher joined the NRC in 1995 and manages a section of 26 scientists and 5 PhD students involved in protein expression and CHO cell line development for internal projects and external clients. His research activities focus on improving large-scale transient gene expression (LSTGE) platforms using HEK293 and CHO cells for protein production. A special emphasis is on developing and engineering stable CHO pool and clonal cell line platforms for recombinant protein manufacturing. Yves is also an adjunct professor at the Department of Biochemistry and Molecular Medicine at the Université de Montréal.
A CHO stable pool production platform for rapid clinical development of trimeric SARS‐CoV‐2 spike subunit vaccine antigens
Protein expression from stably transfected Chinese hamster ovary (CHO) clones is an established but time‐consuming method for manufacturing therapeutic recombinant proteins. The use of faster, alternative approaches, such as non‐clonal stable pools, has been restricted due to lower productivity and longstanding regulatory guidelines. Recently, the performance of stable pools has improved dramatically, making them a viable option for quickly producing drug substance for GLP‐toxicology and early‐phase clinical trials in scenarios such as pandemics that demand rapid production timelines. Compared to stable CHO clones which can take several months to generate and characterize, stable pool development can be completed in only a few weeks. Here, we compared the productivity and product quality of trimeric SARS‐CoV‐2 spike protein ectodomains produced from stable CHO pools or clones. Using a set of biophysical and biochemical assays we show that product quality is very similar and that CHO pools demonstrate sufficient productivity to generate vaccine candidates for early clinical trials. Based on these data, we propose that regulatory guidelines should be updated to permit production of early clinical trial material from CHO pools to enable more rapid and cost‐effective clinical evaluation of potentially life‐saving vaccines.